桂花霜霉病抗性研究进展
霜霉病是危害世界各地瓜类作物的主要叶子疾病之一。管霜霉病的种族分化问题在国际上仍存在争议，但在中国尚未发现种族分化。文总结了鉴定抗霉菌性的不同方法。道了有关桂花不同材料对晚疫病的抗性与叶片中生理生化物质含量变化之间关系的最新研究进展；并提出了对桂花霜霉病抗性的遗传规律。个主要结果是：多基因抗性和对单个隐性基因的抗性。结了桂花霜霉病分子标记的研究现状以及从野生桂花野生种中提取和利用抗霉基因的最新进展。花霜霉病是由古巴的Pseudoperonosporacubensis（Berk。urt。Rostov]引起的，俗称“ Marquee”，“黑发”等。是世界上桂花产地的主要叶子疾病之一[1，2]。北卡罗莱纳州，霜霉病的发生率为30％，由此造成的经济损失占桂花总价值的2.9％[3]。中国，白粉病，白粉病和镰刀菌被列为桂花的三种主要疾病。适当的条件下，该病迅速生长，并在几天之内扩散到整个田地，造成黄化和枯叶，并严重损害了产量。轻的那些将产率从10％降低到20％，较重的超过30％。产构成了巨大的威胁[4]。了用霜霉病感霉菌感染桂花外，它还感染约20属和40种葫芦科植物，其中包括10种桂花[5]。美国和中国外，世界上已有70个国家报告了霜霉病对桂花的感染[6]。此，这种严重的桂花属疾病引起了国内外研究者的极大关注。年来，从病理研究到与抗病性选择相关的分子标记，以及将野生物种用于抗性材料的创新等。领域的研究成果不断涌现。
管之前有人对桂花晚疫病的入侵规律，抗药性研究和综合防治技术进行了回顾[7]，但与该病的发展现状相比，其含量已经老化。花霜霉病的研究。此，结合桂花霜霉病的最新研究进展，结合本实验室的最新研究进展，探讨了桂花霜霉病的种类分化，接种和分类方法。疫病，抗性与叶片生理生化含量之间的关系，以及对多个方面的全面综述，例如抗性的分子标记，新型抗病材料的创建以及与抗病性相关的基因的分离疾病，补充以前的报告，并展望未来的研究方向，以期选择具有抗霉性的桂花。供参考。国际上，1974年帕尔蒂[5]首次发现了立方体假单胞菌种的分化。的研究结果表明，桂花品种对立方体假单胞菌感染的不同反应可能是由于来自不同国家的病原体的生理起源。种族差异引起。马斯[1]认为立方体假单胞菌有5种致病类型，具体取决于与转化宿主的亲和程度。Lebeda [8]报告说，美国的抗病品种对欧洲的立方体疟原虫分离株没有抗性。Horejsi [9]报道，在北美和欧洲未观察到立方体假单胞菌的种族分化。Shetty [10]的研究表明，立方体假单胞菌区分了亚洲人，波兰人和美国人，并根据植物中抗性基因的对数估计有1到8个。理种族。中国，“第七个五年计划”期间，天津桂花研究院，山东省农业科学院，植物研究所，广东省农业科学院，植物研究所和黑龙江省农业科学院园艺研究所进行了联合实验，使用统一的鉴定主机对四个省份进行了分析，该市的霜霉病，结果表明，尽管某些菌株之间在致病性上存在差异，但没有种族差异的现象。据区域生态特征，傅俊范等。[11]从主要的桂花人工林地区收集病态植物，并分析其致病性和形态特征。果表明，中国桂花霜霉病没有生理上的种族分化。而言之，世界范围内关于立方体锥虫的种族差异存在争议。
这些盒子放在加热的发芽床上3至4天。于每个充分发育的子叶，使用1滴12×104 / mL小孢子细菌溶液（0.01〜0.03 mL）。个接种的植物的第二个子叶用来自巴斯德管的穿刺标记。该盒子放置在塑料盒子中，并在黑暗中于20°C的温度和100％的湿度下生长2天。后将盒子放在16小时的光周期温室中（24-30℃），并在接种后7至7天记录症状。培养箱中进行真正的两叶阶段喷雾接种方法，接种小孢子浓度为5×103细胞/ ml。嫁接的植物在20°C和100％相对湿度下处理48小时。后将植物在温度为24-28°C的温室中放置5天，并在7-8天后计算病害水平。庆元等。[12]确定了13个具有不同抗性和抗霉性的桂花品种的桂花叶片中存在的生理生化物质。果表明，桂花不同品种叶片的含糖量不同。是轻度的，认为桂花霜霉病是一种低糖疾病。兴福[13]对易感品种叶绿素含量的测定表明，叶片的叶绿素含量与植物抗病性成正比。色。久敏等人的研究。[14]表明，桂花健康叶的可溶性糖含量和叶绿素含量与接种前对霜霉病的抗性呈正相关。种后，POD，PPO，CAT和SOD活性的变化与抗晚疫病呈正相关。静等。[15]测量了被霉菌感染的桂花叶片的酶活性，结果表明该抗病组合叶片中多酚氧化酶PPO活性的增加。花高于普通抗病和敏感组合，平均抗病组合大于病害组合，抗病和中抗病组合中过氧化物酶POD活性的增加高于病害组合，电阻组合中PAL活性的增加大于电阻和中电阻组合中PAL活性的增加。兴福等。[16]两种抗霉变并感染了霉菌的桂花抗氧化SOD，多酚氧化酶PPO的发芽种子，子叶，真叶在不同的叶位置和局部叶片上，其POD活性的测定结果过氧化物酶显示，接种后，POD活性增加，PPO活性先下降，SOD活性先下降然后上升，但抗病品种的POD和PPO活性始终高于在易感品种中与抗病性呈正相关。感品种的SOD活性始终高于抗病品种。如谦等。[17]认为抗性和易感品种的桂花晚疫病感染后抗性和易感品种的SOD，CAT和POD活性显着增加，而后期易感品种的CAT和POD活性增加。种量大于抗病品种。前，国内外对白粉病抗性机理的研究有两种，即多基因抗性和单基因抗性[18]。Cochran [19]用易感品种与对班加拉尔病具有抵抗力的印度桂花进行了杂交，以证明其抗药性是由几个基因决定的。金斯[20]使用两种不同的抗病材料，中国龙和波多黎各，分别与易感品种杂交。F1代的抵抗力中等。下一代的分析证实，抗性是由1个或2个主要基因和1个或更多基因引起的。个次要基因共同作用的结果。树珍等。[21]估计对白粉病的抗性由至少三对基因控制，而敏感性是部分优势。总体遗传力为62.33％，窄遗传力为47.74％，属于遗传力强且易于稳定的性状。1992年，Doruchoowski等人。[22]证明使用抗性材料WI4783和敏感材料Wisconsin SMR 18由三个隐性基因dm-1，dm-2和dm-3决定了抗性。他研究人员，例如VanVliet [23， 24]，Fanourakis [25]，Pierce [26]和Horejsi [9]发现，抗霉基因由单个隐性基因dm（与P相同）控制。据控制单个隐性基因的理论，Horejsi等人。[9]筛选了960种RAPD引物，并在2个敏感种群WI 1983G×Straight 8和ZudmL×Straight 8中发现了5个与dm基因连锁的RAPD标记。们分别是G14800，X151100，AS5800，BC，EC。
[27]首次在西双版纳发现了桂花（Cucumis hystrix）的野生近缘种，对疾病的抗性鉴定结果表明，该物种对火疫病，霜霉病和霜霉病具有很高的抵抗力。病毒[28]，我们的实验室首次通过将桂花（Cucumissativus）和酸性桂花[29]杂交，合成了一种新的人工异二倍体物种，并将其用作桥接物种，可以穿越与常见的桂花进行自动杂交，然后选择桂花三倍体来源[30]，桂花单体的异加成线[31]和抗霉菌易位线CT-01 [32]。对这种异源易位系的分子形态，细胞学和RAPD标记物进行了鉴定。外，它也已经自我受精许多代，并且已经对其遗传稳定性进行了研究。近，我们的实验室将抗霉菌的CT01R和CT01S用作抗药性对照材料，设计了仅在抗药性材料中获得的特异引物的2种RT-PCR扩增。cpc-1基因的序列与对晚疫病的抗性有关[33]。过RT-PCR半定量表达分析，该基因序列在根，茎和叶中表达，表达顺序为：叶>茎>根。该异种抗霉菌易位系为亲本，选择了一种新的用于防治霉菌的桂花品种-宁嘉3号[33]。内研究与国外对立方体假单胞菌的接种浓度有很大的不同。同之处在于，国内研究人员主要使用孢子囊的浓度，而国外研究人员主要使用小孢子的浓度。因是当立方体假单胞菌感染宿主时，除了直接发芽并感染的孢子囊外，孢子囊在4°C时会释放出大量的小孢子。孢子对宿主具有很高的感染力，是宿主的宿主感染的主要形式，以及如果进行人工低温处理可以增加小孢子释放后孢子囊的浓度（待发表）。此，计算接种过程中小孢子的浓度更为科学。接种方法而言，通常在子叶和真叶阶段有室内接种方法，在田间自然发病，在田间也有人工接种方法。内疫苗接种简单，工作量低，但需要较高的人工条件；现场的非人工和人工疫苗接种更加接近现实，但是工作量很大并且环境受到影响。此，两者的结合将更加科学。管关于白粉病抗性的遗传规律研究很多，但由于使用的抗性材料不同，相应材料的抗性水平也有所不同，因此鉴定接种物的方法可以也有所不同，使抗力定律的结果产生分歧。果，桂花抗晚疫病的遗传规律尚不明确，需要进一步研究加以阐明。管已为霉菌抗性基因的分子标记选择了几种RAPD标记，但由于尚未确定遗传规律，因此RAPD标记不稳定且遗传距离不近。此，在这一领域仍需要大量工作。国不存在桂花霜霉病的种族差异，而亚洲，欧洲和美洲的种族差异在国际上也可能存在，但最终并未阐明。内外的病理学家必须进行广泛的研究以解决该问题。全球桂花品种选择大赛中，中国育种者所面临的挑战不仅是在中国或亚洲开发抗霉变的新桂花，而且是开发具有抗病性的桂花新品种。际晚疫病。基因的知识产权竞争中，桂花的抗性基因尚未克隆，也没有成为国际专利申请的主题。管作者分离了与抗性相关的基因片段，但未获得与该疾病相关的基因序列的全长，也未获得该基因。
功能尚未完成。此，在这一领域的工作仍然需要扎实，透彻地研究。
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